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解決方案

人類外周血染色體制備

點擊次數(shù):2710  日期:2014/2/12 8:53:19

人類外周血染色體制備-主要試劑
1. RPMI-1640按要求10.4克/1000ml配制成溶液,并加入NaHCO3 2.0克/1000ml以緩沖pH。完全溶解后經(jīng)0.22 μm滅菌濾膜抽濾除菌。
2. 肝素鈉(肝素):稱取0.2g溶于100ml雙蒸水中,濃度為0.2%,15磅20分鐘滅菌。
3. 秋水仙堿(秋水仙素〕,生理鹽水配制成10μg/ml濃度,15磅20分鐘滅菌,分裝,置-20℃。
4. 低滲液:0.35%KCl。
5. 固定液(Carnoy固定液) 甲醇∶冰乙酸(3∶l),臨時配制。
6. Giemsa工作液:1份原液和10份磷酸緩沖液,臨時配制。
7. 磷酸緩沖液:1/15M Na2HPO4、1/15M KH2PO4等體積混和。
8. 5% NaHCO3滅菌濾器抽濾備用。
人類外周血染色體制備-主要設(shè)備
5ml注射器(7號針尖),培養(yǎng)瓶、刻度吸管,需15磅滅菌20分鐘。離心管、吸管、量筒、載玻片,經(jīng)洗液按常規(guī)清洗、烘干備用。
超凈工作臺,恒溫培養(yǎng)箱,天平,離心機(jī)、顯微鏡等。
人類外周血染色體制備-實驗步驟
1. 細(xì)胞培養(yǎng)
1) 培養(yǎng)基的配制:
在超凈工作臺中,100ml培養(yǎng)基含以下成分和比例:
RPMI-1640 84ml
小牛血清 15ml
PHA 3支
肝素鈉 1ml
卡那霉素 終濃度為100單位/ml
以5% NaHCO3(無菌)或1N HCl調(diào)pH至7.2-7.4。
用刻度吸管將培養(yǎng)液分裝入培養(yǎng)瓶(10ml/瓶),4℃?zhèn)溆谩?br />2) 采血:酒精消毒皮膚,肘靜脈采血0.3—0.5ml,立刻將注射針直接穿過培養(yǎng)瓶的橡膠塞,向10ml培養(yǎng)基中注入30—40滴全血,輕搖勻后置37℃恒溫箱培養(yǎng)。
3) 培養(yǎng):時間為68小時。培養(yǎng)期間,定期輕搖勻,使細(xì)胞充分接觸培養(yǎng)基。
4) 秋水仙素處理:終止培養(yǎng)前2—4小時,在培養(yǎng)液中加入秋水仙堿(用1ml注射器5號針尖滴加2滴,使終濃度為0.07μg/ml)。
2. 染色體制備
1) 收集細(xì)胞:將培養(yǎng)物全部轉(zhuǎn)入潔凈離心管中,以1000rpm離心8—10分鐘,棄上清液。
2) 低滲處理:向刻度離心管中加入預(yù)溫37℃的低滲液8ml,用滴管混勻,置37℃恒溫水浴中低滲15—25分鐘。
3) 預(yù)固定:低滲后加入0.5ml固定液,輕輕混勻后1000rpm離心8—10分鐘。
4) 一固定:棄上清液,加入5ml固定液,輕輕混勻,靜置20分鐘。1000rpm離心,棄上清液。
5) 二固定、三固定:同一固定。
6) 制懸液:棄上清液后,視細(xì)胞數(shù)量多少加入適量固定液制成細(xì)胞懸液。
7) 滴片:吸取細(xì)胞懸液自10—20cm高滴在一張干燥潔凈的載玻片上,輕吹散,氣干。
8) 染色:1:10 Giemsa染色5—10分鐘,細(xì)水洗去多余染液,氣干。
9) 鏡檢:低倍鏡下尋找分散良好、染色適中的分裂相,油鏡下觀察染色體形態(tài)并計數(shù)。
    人外周血小淋巴細(xì)胞,通常都處在G1期(或G0期),一般情況下不進(jìn)行分裂。如在培養(yǎng)液中加入植物血凝素(PHA),這種小淋巴細(xì)胞受到刺激可轉(zhuǎn)化為淋巴母細(xì)胞,進(jìn)入有絲分裂。短期培養(yǎng)后,經(jīng)秋水仙素處理,低滲和固定,即可得到大量的有絲分裂細(xì)胞。人體的1ml外周血內(nèi)一般含有約1×106~3×106個小淋巴細(xì)胞,足夠染色體標(biāo)本制備和分析之用。
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